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SpectraPen SP110手持式光谱仪

 

SpectraPen SP110手持式光谱仪是一款低成本、多用处手持式光谱仪，宽泛用于尝试室钻延注农业和工业领域。SpectraPen能够丈量各类样品的吸收率、反射率、透射率、发射光谱、色彩和荧光分析等（仪器自身不含光源）。

SpectraPen使用可充电锂电池供电，配罕见据采集器和触控屏，不必要使用电脑即可独立进行丈量。齐全的光谱图及每个波长的光强读数都能够即时显示在触控屏上。SpectraPen还专门内置了测定反射率和透过率的职能。丈量数据和光谱图都可能通过USB接口导出到电脑上。

 

利用领域：

?植物反射光谱

?野表/室内光质分析，如植物成长环境中光质的差距

?人为光源质量检测

?光学滤波片和；て恋墓馄准觳

?波长（光色）丈量

?各类样品的反射率、透射率、荧光和吸收率丈量

 

技术特点：

?职能最全面的通用高光谱丈量仪，可直接丈量各类样品的反射光谱，也可加装余弦校对器丈量光源的发射光谱。

?除直接丈量光谱图以表，还能够丈量并推算天生透射率和吸收率谱图

?手持式仪器，电池供电，无需表部电脑，便于野表丈量。

?内置GPS

 

组成：

?SpectraPen SP 110提供可丈量分歧波长领域的两种型号：

   ?SpectraPen SP 110-UVIS波长领域为340-790nm

   ?SpectraPen SP 110-NIR波长领域为640-1050nm

?   余弦校仇家，用于光源丈量（选配）

 

丈量与推算参数：

?光谱曲线图

?吸收谱图

?透射谱图

?GPS地理数据

 

技术参数：

?光学探头：带SMA905接头的0.22数值孔径单芯光纤

?光谱响应领域：

   ? SP 110-UVIS 340-790nm

   ? SP 110-NIR 640-1050nm

?光谱响应半宽：

   ? SP 110-UVIS 9nm

   ? SP 110-NIR 8nm

?余弦校对器（选配）：用于丈量天然光某人为光源

?光谱杂散光：-30dB

?波长巢轮性：+/- 0.5nm

?积分功夫：5ms-10s

?   像素数量：256

?触控屏：240×320像素，65535色

?内存：16MB（可存储4000次以上丈量数据）

?系统数据：16位数模转换

?动态领域：高增益 1:4300；低增益 1:13000

?通讯方式：USB

?内置GPS？椋鹤畲缶龋1.5m

?尺寸：15×7.5×4cm

?沉量：300g

?表壳：防水溅表壳

?电池：2600mAh可充电锂电池，通过USB接口衔接电脑充电

?续航功夫：可陆续丈量48幼时

?工作前提：温度0~55℃，相对湿度0-95%（无冷凝水）

?存放前提：温度-10~60℃，相对湿度0-95%（无冷凝水）

 

产地：捷克

 

利用案例：

捷克科学院、捷克南波西米亚大学与英国帝国理工学院合作钻研了蓝藻光合作用特殊红素氧还蛋白的职能与调节。尝试中，SpectraPen光谱仪用于丈量造就光照光谱，AquaPen手持式叶绿素荧光仪进行脉冲调造动态荧光丈量，FL3500双调造式荧光仪用于QA-再氧化动力学丈量。钻研成就颁发于《Plant Cell》（Kiss，2019）。

 

捷克马萨里克大学和捷克科学院合作钻研南极地衣的水合作用。钻研人员使用SpectraPen光谱仪丈量地衣反射光谱变动，同时使用FluorCam叶绿素荧光成像系统对地衣光合系统进行相应的丈量（Mishra，2019）。

 

   

 

参考文件

1. Kiss, E., Knoppova, J., Pascual Aznar, G., et al. 2019. A Photosynthesis-Specific Rubredoxin-like Protein Is Required for Efficient Association of the D1 and D2 Proteins during the Initial Steps of Photosystem II Assembly. The Plant Cell 31: 2241-2258

2. Mishra, K. B., Vítek, P., & Barták, M. 2019. A correlative approach, combining chlorophyll a fluorescence, reflectance, and Raman spectroscopy, for monitoring hydration induced changes in Antarctic lichen Dermatocarpon polyphyllizum. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy, 208: 13–23

3. Fernández-Marín, B., García-Plazaola J. I., Hernández, A., & Esteban, R. 2018. Plant Photosynthetic Pigments:Methods and Tricks for Correct Quantification and Identification. Advances in Plant Ecophysiology Techniques: 29–50.

4. Lazzarini, L. E. S., Bertolucci, S. K. V., P. et al. 2018. Quality and intensity of light affect Lippia gracilis Schauer plant growth and volatile compounds in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC).

5. CD Giustina, et al. 2017. Growth f Different Fruit Tree Species In Silvopastoral Systems During The Establishment Phase. Rev. Caatinga 30(4)

6. M Navrátil, et al. 2016. Measurements of reflectance and fluorescence spectra for nondestructive characterizing ripeness of grapevine berries. Photosynthetica 54(1): 101-109

7. P D?browski, et al. 2015. Measuring light spectrum as a main indicator of artificial sources quality. Journal of Coastal Life Medicine 3(5): 398-404

8. D ?ebela, et al. 2015. Temporal chlorophyll fluorescence signals to track changes in optical properties of maturing rice panicles exposed to high night temperature. Field Crops Research 177: 75-85

9. P D?browski, et al. 2015. Chlorophyll a fluorescence of perennial ryegrass (Lolium perenne L.) varieties under long term exposure to shade. Zemdirbyste-Agriculture 102(3): 305-312

10. ICA Alvarenga, et al. 2015. In vitro culture of Achillea millefolium L.: quality and intensity of light on growth and production of volatiles. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC) 122(2): 299-308